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2013年8月29日,Whitehead生物医学研究所Rudolf Jaenisch团队(杨辉为第一作者)在Cell 在线发表题为“One-Step Generation of Mice Carrying Reporter and Conditional Alleles by CRISPR/Cas-Mediated Genome Engineering”的研究论文,该研究通过与Cas9 mRNA和不同的指导RNA(sgRNA)以及不同大小的DNA载体共同注入合子,创建了报告基因小鼠和条件突变小鼠。 使用这一一步程序的方法,该研究生成了在Nanog,Sox2和Oct4基因中带有标签或荧光报告基因构建体的小鼠,以及Mecp2条件突变小鼠。此外,使用靶向Mecp2基因中两个不同位点的sgRNA,该研究制备了小鼠,其携带预计约700 bps的缺失。该研究发现通过显微注射2个单指导RNA(sgRNA)和2个单链寡核苷酸作为供体,在产生条件敲除(cKO或floxed)等位基因方面的效率高达16%。但是,对于条件敲除的效率达到了16%,在转基因领域引起了震动,众多研究人员质疑杨辉等人的研究成果。2019年8月26日,全球20多个实验室组成联盟,对于杨辉发表在Cell 的研究论文进行了重复,Gurumurthy等人在Genome Biology 在线发表题为“Reproducibility of CRISPR-Cas9 methods for generation of conditional mouse alleles: a multi-center evaluation”的研究论文,该研究从全球20个实验室的联合合作中重新评估了“双供体”的方法。该数据集包含56个遗传基因座,17,887个受精卵和1718个活体出生的小鼠,其中只有15个(0.87%)小鼠包含cKO等位基因。总之,该研究发现“两供体”方法缺乏效率,因为它依赖于同时发生的两个重组事件。使用“单供体”DNA的方法相当有效,因为它们仅依赖于一个重组事件,并且正确插入供体盒而没有意外突变事件。因此,单供体方法为常规生成cKO动物模型提供了更高的效率。2021年4月7日,杨辉等人在Genome Biology 发文回复Gurumurthy等人质疑,指出其他已经有团队能重复出来,重复实验时的方法以及试剂浓度都不同,导致了实验无法重复。
另外,在同一天Gurumurthy等人也发文回应了杨辉在Genome Biology 的回复文章,指出:没有实验室的效率能达到16%,当初的Cell 文章没有公布试剂的使用浓度等细节。最后,Cell 出版社是否会进一步采取行动,我们持续关注。
CRISPR和Cas(CRISPR相关的)蛋白在细菌和古细菌中起基于RNA的适应性免疫系统的作用。 II型细菌CRISPR / Cas系统已被证明是一种有效的基因靶向技术,可促进多重基因靶向。由于Cas9的结合是由工程单向导RNA(sgRNA)与目标基因组DNA序列之间的简单碱基对互补性指导的,因此可以通过提供工程sgRNA将Cas9定向到任何基因组位点。
2013年8月29日,Whitehead生物医学研究所Rudolf Jaenisch团队(杨辉为第一作者)在Cell 在线发表题为“One-Step Generation of Mice Carrying Reporter and Conditional Alleles by CRISPR/Cas-Mediated Genome Engineering”的研究论文,该研究通过与Cas9 mRNA和不同的指导RNA(sgRNA)以及不同大小的DNA载体共同注入合子,创建了报告基因小鼠和条件突变小鼠。
使用这一一步程序的方法,该研究生成了在Nanog,Sox2和Oct4基因中带有标签或荧光报告基因构建体的小鼠,以及Mecp2条件突变小鼠。此外,使用靶向Mecp2基因中两个不同位点的sgRNA,该研究制备了小鼠,其携带预计约700 bps的缺失。最后,该研究分析了基因修饰小鼠和ESC系中5个sgRNA的潜在脱靶现象,并仅在极少数情况下鉴定了脱靶突变。◎ 全球20个实验室联盟在Genome Biology 发文质疑杨辉等人Cell 的研究成果
CRISPR-Cas9基因编辑技术促进了基因敲除小鼠的产生,为繁琐且耗时的传统基于胚胎干细胞的方法提供了替代方法。杨辉等人的研究发现通过显微注射2个单指导RNA(sgRNA)和2个单链寡核苷酸作为供体,在产生条件敲除(cKO或floxed)等位基因方面的效率高达16%(在本文中称为“双供体融合”方法)。2019年8月26日,全球20多个实验室组成联盟,对于杨辉发表在Cell 的研究论文进行了重复,在Genome Biology 在线发表题为“Reproducibility of CRISPR-Cas9 methods for generation of conditional mouse alleles: a multi-center evaluation”的研究论文。该研究从全球20个实验室的联合合作中重新评估了“双供体”的方法。该数据集包含56个遗传基因座,17,887个受精卵和1718个活体出生的小鼠,其中只有15个(0.87%)小鼠包含cKO等位基因。该研究对数据集进行了统计分析和机器学习算法,这表明所分析的因素均无法预测该方法的成功。该研究测试了一些在18个基因座上使用单供体DNA的较新方法,其中“两供体”方法未能产生cKO等位基因。该研究发现,“一供体”方法比“二供体”方法效率高10到20倍。总之,该研究发现“两供体”方法缺乏效率,因为它依赖于同时发生的两个重组事件。使用“单供体”DNA的方法相当有效,因为它们仅依赖于一个重组事件,并且正确插入供体盒而没有意外突变事件。因此,单供体方法为常规生成cKO动物模型提供了更高的效率。◎ 杨辉等人在Genome Biology 发文回应质疑
Gurumurthy等最近报道了一种由杨辉等人开发的方法,重复性较差。他们声称三个研究中心无法重现我们生成Mecp2基因座的条件等位基因的结果,并且“双供体法”在其他基因座上的成功率很低。
的确,杨辉等人对这些声明提供了答复:
1.Yang等人发表的关于Mecp2基因座的结果。分别通过在Jaenisch(正确的等位基因为8–10%),Yang(正确的等位基因为8%)和Hatada组(正确的等位基因为2–6%)中进行了独立实验复制。此外,多家同行评审的出版物已成功使用此方法创建条件基因敲除(CKO)小鼠(成功完成了11个基因座中的9个,效率为2.5%至18%)。杨辉等人注意到,CRISPR / Cas9产生CKO小鼠的效率可能会有所不同,这可能是由于平台功能或实验条件不同所致。2. Gurumurthy等人使用的条件不符合本文中使用的条件。Gurumurthy等人的研究使用的CRISPR试剂在Mecp2基因座上的浓度(Cas9 mRNA为10μng/μl,sgRNA为10μng/μl,寡聚体为10μng/μl)的浓度要低得多。众所周知,CRISPR试剂的浓度与基因组编辑效率密切相关。3.杨辉等人在原始论文中使用了压电驱动的合子注射方法,该方法允许以更高的浓度注射CRISPR组分。这种方法与Gurumurthy等人使用的原核注射方法之间的区别,也可能会导致成功率的差异。通常,在使用任何基因组编辑方法或策略的情况下,不同基因组位点的效率通常变化很大。随着基因组编辑技术的快速改进,杨辉和许多其他公司不断优化杨辉等人开发的实验方法。杨辉等人欢迎所有针对特定应用选择最佳策略的讨论,但是,杨辉等人认为,只有通过使用完全相同的实验方法和技术参数,才能验证任何已发表论文的可重复性。
◎ Gurumurthy等人在Genome Biology 发文再次回应杨辉的答复
Jaenisch实验室2013年发表在Cell 上的两项研究取得了突破性进展,首次证明了CRISPR介导的基因在小鼠合子中产生敲除和条件等位基因的原理证明,并在转基因小鼠领域中引起了极大的兴奋。但是,在过去的几年中,在许多实验室中,当一步一步产生条件等位基因时,现实却与兴奋不符。确实,正如杨辉等人的评论,指出,他们自己对Mecp2基因座(它们的#1点)进行了进一步的重现性实验,这些未发表的结果未能从其原始出版物中再现出16%的效率。而且,我们的研究并不是首次引起人们双供体方法效率的关注,转基因领域其他人的报道也是如此,其中指出:令人失望的是,我们谁都无法复制Jaenisch报告的效率。关于他们的第二点,令人遗憾的是,杨辉等人没有报道所用试剂的浓度细节 。现在,作者以此来信称他们在另一份报告中提供了浓度,但是该参考文献没有描述条件等位基因的产生。另外,较大的试剂浓度范围不会影响杨辉等人的方法效率。此外,Hadada的研究小组(Horii等人)尝试复制Mecp2实验,他们报告说,当试剂浓度在较高范围内时,效率非常低或毒性很高。50/12/100的浓度仅产生2%的效率,而100/24/200的浓度导致近90%的胚胎死亡,作者无法确定该较高浓度下该方法的效率。关于他们的观点#3,作者推测压电驱动的合子注射可能有助于成功率的差异。有必要通过比较几个基因座并排比较压电驱动和原核注射方法的效率来检查这种推测。由于不同基因组位点的效率通常相差很大,因此收集至少6至10个位点或更多位点的此类并排数据是理想的。否则,该假设仍然是推测性的。我们必须以尽可能高的标准来维持已发布的方法,特别是在小鼠转基因领域,在该领域中,广泛采用低效率的基因操作策略可能会对研究中使用的动物数量产生伦理后果。总体而言,科学目前存在可再现性危机,作为科学家,我们有责任对公开发表的方法进行严格的测试,并采用更高性能的结果分析有时会自相矛盾,它们本身也会发表。
https://www.cell.com/cell/fulltext/S0092-8674(13)01016-7?_returnURL=https%3A%2F%2Flinkinghub.elsevier.com%2Fretrieve%2Fpii%2FS0092867413010167%3Fshowall%3Dtrue#%20https://genomebiology.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13059-019-1776-2https://genomebiology.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13059-021-02312-3#ref-CR1https://genomebiology.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13059-021-02320-3
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